Le frottis sanguin est une méthode très importante pour examiner les cellules sanguines et possède un large éventail d’applications cliniques. Pour avoir une analyse complète et une compréhension de l'état des cellules sanguines, il est nécessaire de faire un frottis sanguin. Pour les gens ordinaires, comprendre cet aspect est inutile, mais en médecine, c'est très important et fait partie des choses professionnelles. Alors, comment se fait un frottis sanguin ? Regardons cela de plus près. 1. Nettoyage des lamesPlacez la lame dans du savon ou de la lessive et faites bouillir pendant 20 minutes ; utilisez de l'eau chaude pour éliminer la saleté comme le savon et le film sanguin, rincez plusieurs fois à l'eau du robinet, puis rincez 3 à 5 fois à l'eau distillée. Si nécessaire, faites-la tremper dans de l'alcool à 95 % pendant 1 heure, puis essuyez-la ou faites-la cuire pour une utilisation ultérieure. Faites tremper la nouvelle lame de verre dans de l'alcool à 95 % ou de l'acide chlorhydrique à 10 % pendant 24 heures, puis lavez-la soigneusement à l'eau. 2. Collecte d'échantillons Commencez par désinfecter votre annulaire avec de l'alcool à 75 %. Une fois l'alcool sec, percez la peau et laissez le sang s'écouler naturellement. Ne pressez pas trop fort. Prenez une lame propre et placez une goutte de sang à 4 à 5 mm de la lame. Veillez à tenir le bord de la lame avec vos doigts et à éviter de toucher sa surface. Ne laissez pas la lame toucher la peau au niveau du site de prélèvement sanguin. Après le prélèvement sanguin, poussez rapidement la lame pour éviter la coagulation du sang. Si le sang est prélevé à partir d'un tube anticoagulant, le sang doit être frais, sinon il endommagera les cellules sanguines. 3 Préparation des frottis sanguins Français : Exigences relatives aux lames : 1,0 mm × 26 mm × (76 ± 0,5) mm ; Exigences relatives à la poussée des lames : Le bord de la lame doit être net et lisse ; La qualité du frottis sanguin est directement liée à la taille de la goutte de sang, à l'angle de poussée de la lame et à la vitesse de poussée de la lame. Lors de la poussée de la lame, plus la goutte de sang est grosse, plus l'angle est grand et plus la vitesse de poussée de la lame est rapide, plus le film sanguin est épais, et vice versa. La répartition inégale du film sanguin est principalement causée par une poussée inégale de la lame, une force inégale et une lame de verre sale. Pour obtenir un frottis sanguin uniforme, il faut appliquer une force uniforme et maintenir l'angle constant. Si la force est trop faible, le frottis sera trop épais pour être observé et ne pourra pas être poussé une deuxième fois ; si la force est trop forte, les cellules sanguines seront endommagées. Après la production, il peut être agité à l'air pour le faire sécher rapidement afin d'éviter que les cellules sanguines ne rétrécissent. En même temps, une fois le film sanguin séché, il est préférable de le fixer et de le colorer immédiatement pour éviter la contamination des cellules et la dissolution. L'effet sera médiocre après un stockage à long terme. Les tranches de film sanguin nécessitent : le film sanguin est uniforme, aussi fin qu'une aile de cigale, l'extrémité de la queue est en forme d'arc et le film sanguin présente des zones d'épaisseur différente au niveau de la tête, du corps et de la queue. Faites attention à l’état sanguin du patient, comme le degré d’anémie, la viscosité du sang, le nombre de globules blancs ou de cellules nucléées, et ajustez la technique de poussée du film. 4 Coloration par frottis sanguin La coloration rapide de Wright, disponible dans le commerce, est rapide et claire pour observer la morphologie cellulaire, mais elle détruit souvent les globules rouges. Par conséquent, le frottis sanguin doit d'abord être recouvert de la coloration traditionnelle de Wright, puis la coloration rapide de Wright est ajoutée, et enfin la solution tampon est ajoutée en quantité suffisante et soigneusement mélangée. Temps de coloration : En été, il est plus facile d'utiliser plus de tampon et de solution de coloration, et le temps doit être relativement plus court, sinon la solution de coloration s'évaporera rapidement et le colorant se déposera sur les cellules, les rendant difficiles à identifier et affectant l'effet de lecture. Si la teinture est trop claire, vous pouvez la reteindre en suivant les étapes d'origine. Lors du rinçage à l'eau du robinet, rincez lentement pour permettre aux sédiments et aux particules de coloration de la solution de coloration de flotter, ce qui lui permet de jouer pleinement son rôle dans la séparation des couleurs, d'éliminer les couleurs flottantes dans la coloration cellulaire et de montrer la structure nucléaire et la morphologie claire des cellules. Attendez qu'elle soit sèche et examinez-la au microscope. S'il y a des résidus colorés sur le frottis, ils peuvent être éliminés de trois manières : tout d'abord, ajoutez une solution de colorant bleu éosine-méthyle au frottis, secouez-le légèrement pour dissoudre le résidu coloré dans le méthanol, attendez que le méthanol s'évapore, puis ajoutez de l'eau distillée ou une solution tampon. La deuxième méthode consiste à placer le frottis sanguin dans un réservoir d’eau, en le maintenant à niveau, et le résidu de couleur débordera du bord de la lame. La troisième méthode consiste à incliner le frottis sanguin à 45 degrés, à absorber 95 % d'alcool et à l'appliquer lentement sur la surface du frottis jusqu'à ce que l'alcool coule et devienne bleu, puis à rincer à l'eau claire et à le sécher. S'il y a de l'huile de cèdre sur le frottis, elle peut être essuyée avec du papier pour lentilles puis traitée avec de l'alcool. Pour déterminer si la teinture a atteint l'effet souhaité, vous pouvez observer si la teinture présente une couche de lustre métallique jaune avant de la rincer. Si ce n'est pas le cas, cela signifie que la teinture a échoué.
La production de frottis sanguins de haute qualité exige que les inspecteurs aient de solides compétences de base et une riche expérience professionnelle. Ils doivent maîtriser la morphologie normale de diverses cellules et les changements spécifiques de la morphologie cellulaire. En même temps, ils doivent avoir une compréhension claire de la distribution approximative des différentes cellules dans le frottis sanguin. En cas de frottis sanguin insatisfaisant, ils doivent analyser et déterminer la cause de l'échec. L'examen du frottis sanguin périphérique comprend généralement les éléments suivants. Morphologie des érythrocytes : Modifications de la taille des érythrocytes et de leur teneur en hémoglobine : microcytes, macrocytes, macrocytes, anisocytose, hypochromie, normochromie, polychromophilie. Modifications de la morphologie des globules rouges : cellules cibles, sphérocytes, cellules ellipsoïdales, stomatocytes, drépanocytes et globules rouges anormaux. Structures anormales dans les globules rouges : y compris les globules rouges alcalins pointillés, les corps de Howell-Jolly, les anneaux de Cabots, les corps de Pappenheimer, etc. Morphologie des granulocytes : si les granulocytes présentent des changements toxiques, tels que des granules toxiques, une dégénérescence vacuolaire, une agglutination nucléaire, une lyse nucléaire et des corps de Pohhe. Vérifiez si les neutrophiles ont des noyaux décalés vers la gauche, des noyaux décalés vers la droite ou même des lobes excessifs. Le frottis doit être vérifié pour détecter des cellules anormales et des cellules immatures, telles que des cellules leucémiques et leurs modifications morphologiques (comme les corps d'Auer), des lymphocytes anormaux, des neutrophiles avec des corps cellulaires géants et des lobes excessifs, des anomalies nucléaires de Pelger-Huet, des corps d'Alder-Reilly ou des granules de Chediak-Higashi dans le plasma, etc.Morphologie plaquettaire : Observez la taille et la distribution des particules, si elles sont distribuées en amas, et recherchez des plaquettes géantes et des micromégacaryocytes. Par conséquent, chaque étape d'un bon frottis sanguin, du nettoyage à la production et à la coloration, doit être méticuleuse et réalisée avec patience et soin. Cela permettra une meilleure observation de la morphologie cellulaire et fournira aux cliniciens des rapports de test fiables et véridiques, servant ainsi mieux la clinique. |
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